国立遺伝学研究所 第10代所長に花岡文雄博士が就任しました。　

花岡文雄博士は、これまで遺伝学の基礎となるDNA複製と修復の研究に邁進され数々の研究業績を挙げられました。

国立遺伝学研究所は花岡文雄博士を所長とする新体制のもと生命科学研究の発展に貢献することを目指します。

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（略 歴）

昭和４８年 東京大学大学院薬学系研究科 博士課程修了

昭和４８年 東京大学薬学部 助手（生理化学教室）

昭和５５年 東京大学薬学部 助教授（生理化学教室）

平成 元年 理化学研究所 主任研究員（放射線生物学研究室 → 花岡細胞生理学研究室）

平成 ７年 大阪大学細胞生体工学センター 教授（細胞構造研究分野）

　　　　　理化学研究所中央研究所 招聘主任研究員（兼務：平成１８年３月まで）

平成１４年 大阪大学大学院生命機能研究科教授（時空生物学講座）

平成１９年 学習院大学理学部教授（化学科）

平成２１年 学習院大学理学部教授（生命科学科）

平成２８年 学習院大学定年退職

平成２８年 筑波大学生命領域学際研究センター センター長

平成３０年 筑波大学生存ダイナミクス研究センター センター長

中沢さん(右)と総研大 長谷川学長

中沢さんより受賞のコメントが届いておりますのでご紹介します。

この度は学位研究にたくさんの良い評価をいただき大変嬉しく思っております。指導教官をはじめ、多くの方のサポートがあったからこそこのような成果を上げることができました。
学位研究では「新生児脳の発達機構」をテーマと掲げ、新生仔マウス脳の長期生体イメージングという世界初の実験系を立ち上げることで、その仕組みの一端を明らかにすることができました。
論文を仕上げたことで見えてくる新しい世界というものもあり、次の（そしてその先の）自分の方向性を今まさに模索中です。新たな生物学的問いの解明に向けて今後も邁進していきたいと思います。

細胞分裂に伴って染色体DNAは正確に倍化（複製）され、娘細胞へと分配されます。DNAの複製は染色体上の複数の場所から始まりますが、その後に鋳型となるDNAの傷や、DNAに強固に結合するタンパク質などが障害となり複製が停止したり，複製速度が低下したりすることが知られています。この現象は、染色体の維持と密接に結びついていると考えられていましたが、その機構は分かっていませんでした。今回我々は、鋳型DNAへのタンパク結合により複製が止まる反応を、精製した酵母のタンパク質から試験管内で再構成することに成功しました。そして、この試験管内反応を解析することにより、複製停止機構の一端を明らかにすることができました。DNA複製の最先端では、２本鎖DNAを１本鎖にほどくDNAヘリカーゼが働き、ほどかれた１本鎖DNAを鋳型にしてDNAポリメラーゼがDNA鎖を合成します。鋳型となるDNAにタンパク質が強固に結合していると、ヘリカーゼが止まるものと信じられていましたが、ヘリカーゼはタンパク質が結合していても２本鎖をほどくことができました。しかし、複製に必要なDNAポリメラーゼε（Polε）を加えると結合タンパク質に依存してヘリカーゼの反応が抑制されることが分かりました．これは、ヘリカーゼとDNAを合成するDNAポリメラーゼとが一体となって障害を検知し、対応する機構があることを意味しています。即ち、細胞は染色体上の障害を検知し複製速度を制御することによって的確に障害を乗り越えているのです。

図：鋳型DNAにタンパク質(LacI)が強固に結合していると、DNAポリメラーゼε（Polε）が複製ヘリカーゼ(CMG)の活性を抑え複製は停止する。Polεが無いとCMGはタンパク質の結合した鋳型2本鎖DNAをほどき、複製は継続する。

2018年10月1日付けで遺伝研に助教が着任しました．

谷澤 靖洋：大量遺伝情報研究室・中村研究室

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日時： 2018年11月 8日（木）13:30 ～ 16:30

会場： 国立遺伝学研究所　講堂

プログラム：・構成のストラテジー
　　　　　　・情報提示の小技
　　　　　　・Q&Aの心得

講師： 広海 健（遺伝研リサーチ・アドミニストレーター室長）

対象： 研究発表に興味がある学生・ポスドク・教員など
　　　 プレゼン技術指導や科学英語教育に関心のある方

言語： 日本語

参加費： 無料

申し込み方法： 他研究機関の方は遺伝研男女共同参画推進室 danjo-nig@nig.ac.jp までメールでご連絡ください。
　　　遺伝研関係者は申し込み不要です。

参考文献： 平⽥たつみ，タジ・ゴルマン，広海健「遺伝研メソッドで学ぶ科学英語プレゼンテーション（2016年 dZERO）」

※ 遺伝研では科学英語プレゼンテーションの 出前研修 も行っています

プレスリリース資料

基礎生物学研究所 進化発生研究部門の安藤俊哉助教と新美輝幸教授らの共同研究チームは、テントウムシの多様な翅の斑紋（模様）を決定する遺伝子の特定に成功しました。

ナミテントウの前翅には、同種でありながら200以上もの異なる斑紋が存在します。この斑紋の多様性は、遺伝の様式から、一つの遺伝子によってもたらされることが古くから知られていましたが、具体的な遺伝子の実体および斑紋形成メカニズムは全く不明でした。本共同研究チームは、ナミテントウのゲノム解読などを行い、斑紋のパターンを決定する遺伝子がパニア（pannier）と呼ばれる遺伝子であることを特定しました。テントウムシの斑紋は、主に黒色と赤色のパターンとして作られますが、この遺伝子は、前翅がつくられる過程の、蛹の中期のステージにおいて黒色色素形成領域で働き、黒色色素（メラニン）の合成を促すと同時に赤色色素（カロテノイド）の沈着を抑制する機能をもつことが明らかになりました。興味深いことに、たった１つの遺伝子の働きにより翅全体の斑紋パターンが決定される機能は、ナナホシテントウにおいても保存されていることが判明しました。

本研究は基礎生物学研究所 進化発生研究部門の安藤俊哉助教と新美輝幸教授らのグループを中心として、東京工業大学の伊藤武彦教授らのグループ、基礎生物学研究所の重信秀治特任准教授らのグループ、明治大学の矢野健太郎教授らのグループ、国立遺伝学研究所の豊田敦特任教授らのグループ、東京大学の鈴木穣教授らのグループからなる共同研究チームにより実施されました。

本研究成果はNature Communicationsに2018年9月21日に掲載されました。

本研究は、科学技術振興機構（さきがけ研究２１「認識と形成」）、科学研究費助成事業 (18017012, 20017014, 新学術領域研究「ゲノム支援」221S0002 , 22380035，26113708, 17H05848, 18H04828)および基礎生物学研究所 共同利用研究(18-433)などの支援を受けて行われました。

遺伝研の貢献
国立遺伝学研究所は、ナミテントウのゲノム解読にあたり、塩基配列決定および決定した配列からゲノム配列の再構築を担当しました。

図：ナミテントウの多様な翅の斑紋

日時： 2018年11月19日（月）13：00 ～ 11月21日（水）13：00

会場： 国立遺伝学研究所 　　静岡県三島市谷田1111

想定スキルレベル： 情報解析中級者

募集人員： 若手研究者 20名程度
　　　・これから自分で実践的にプログラミングをしようと考えている方。
　　　・基本的なLinuxコマンドは身につけていることを前提とします。
　　　・応募者多数の場合は、先進ゲノム支援における支援依頼者を優先します。
　　　　さらに多数の場合は抽選等で参加者を決定いたします。
　　　・応募は支援依頼者毎、研究室毎に1名に限定させていただきます。

参加費用： 無料

申込締切： 2018年10月16日(火)

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日　時： 10月19日（金）19：00～20：30（受付：18：30～）

場　所： 君澤山 蓮馨寺（三島市広小路町1-39）

講演 ①：紅海の海は青かった！
　　　　(サウジアラビアからの海洋生命科学研究報告)

　　五條堀孝氏（国立遺伝学研究所名誉教授、KAUSTディスティングイッシュト
　　プロフェッサー、遺伝学普及会代表理事）

講演 ②：ハダカデバネズミに学ぶ長生きの秘訣

　　小林武彦氏（東京大学教授、日本遺伝学会会長、遺伝学普及会代表理事）

対　象： サイエンスに関心のある一般の方　

定　員： 40名（応募者多数の場合は抽選）

参加費： 1000円

申し込み： 公益財団法人遺伝学普及会　事務局まで　

　　①氏名　②性別　③住所　④電話番号　を明記の上、メール・はがき・FAXでお申込みください。電子申請も可能です。

日時： 2018年10月21日（日）14:00-16:00

場所： 三島市民文化会館【ゆぅゆぅホール】1 階小ホール
〒411-0036 静岡県三島市一番町20−5

対象： 一般

参加費： 無料

講演１： 諏訪 元（東京大学総合研究博物館　館長・教授）
アフリカで誕生した人類の祖先

講演２： 篠田 謙一（国立科学博物館　副館長・人類研究部長）
DNAゲノム解析からさぐる日本列島の古代人－縄文人と弥生人の関係－

講演３： 藤尾 慎一郎（国立歴史民俗博物館　教授）
縄文人は穀物を栽培していたのか？

講演４： 木部 暢子（国立国語研究所　副所長・教授）
日本語と琉球語の成立をさぐる－アクセントの比較対照から－

司会： 斎藤 成也（国立遺伝学研究所　教授）

公開シンポジウム1 「日本列島人1000万年」（第72回 日本人類学会大会）

CRISPR/Cas9システムの開発により、ゼブラフィッシュを含む様々な生物種において簡便かつ迅速にゲノム編集を行うことが可能になりました。さらにトランスジェニックフィッシュにおいてCas9遺伝子とsgRNAを発現させ、組織特異的に変異を導入する方法が開発されてきました。しかしながらこれまでの方法では、Cas9による二重鎖切断ののちに非相同末端結合により変異が作製されるため、その変異が必ずしも遺伝子の機能破壊を引き起こさないという問題がありました。

情報・システム研究機構 国立遺伝学研究所の白木知也 特任研究員と川上浩一 教授の研究グループは、この遺伝子の破壊効率を上げ、さらに複数の遺伝子を同時に破壊するために、複数のsgRNAを一つの転写産物から効率よく産生する手法をゼブラフィッシュにおいて開発しました。さらにこの方法を利用して黒色の色素がなくなるアルビノのトランスジェニックゼブラフィッシュ（Tg-albino）を作出することに成功しました。

本研究では、複数のsgRNAとtRNAを連結した前駆体RNAをトランスジェニックゼブラフィッシュに導入しました。すべての細胞はtRNAのプロセシング機構をもっており、tRNA部分が前駆体RNAから切り出される際に、複数の各々のsgRNAが産生されることを示しました。また私たちは実際に、ゼブラフィッシュのアルビノ遺伝子に対する３種類のsgRNAとtRNAを連結した前駆体RNA、およびCas9遺伝子を発現するトランスジェニック個体においてアルビノの表現型が観察されることを見出しました。

本手法を用いることにより、組織・時期特異的に複数の遺伝子を高効率で破壊することが可能になると考えられ、今後のゼブラフィッシュを用いた遺伝学研究の推進につながると期待されます。

本研究は科研費補助金(JP15H02370, JP16K20983, JP16H01651, JP18H04988)、日本医療研究開発機構ナショナルバイオリソースプロジェクトおよびナショナルバイオリソースプロジェクトゲノム情報等整備プログラムの支援を受けて行われました。

図：(A) tRNAのプロセシングを利用した複数sgRNAの発現方法の概略。 (B) アルビノトランスジェニックフィッシュ（Tg-albino）作製用コンストラクト。albino (slc45a2) 遺伝子に対する３種類のsgRNAを発現する。(C-E) Tg-albinoでは黒色素が消失し、色素合成阻害剤（PTU）処理個体や黒色素細胞のできないnacre変異体と同程度に透明になる。 (C) 三日齢のTg-albino系統。（D）成魚のTg-albino系統。(E) 五日齢のTg-albino系統におけるGFP蛍光イメージ像。